Mestrado Universitario en Bioloxía Molecular , Celular e Xenética
Descriptores
Ciclo
Período
Curso
Tipo
Créditos
Mestrado Oficial
1º cuadrimestre
Primeiro
Obrigatoria
6
Idioma
Castelán
Galego
Inglés
Prerrequisitos
Departamento
Bioloxía Animal, Bioloxía Vexetal e Ecoloxía Bioloxía Celular e Molecular
Coordinación
Insua Pombo, Ana Maria
Correo electrónico
ana.insua@udc.es
Profesorado
Bernal Pita da Veiga, angeles
Castro Castro, Antonio Manuel
Folgueira Otero, Mónica
Insua Pombo, Ana Maria
Rioboo Blanco, Carmen
Yañez Sanchez, Julian
Correo electrónico
angeles.bernal@udc.es
antonio.castro@udc.es
m.folgueira@udc.es
ana.insua@udc.es
carmen.rioboo@udc.es
julian.yanez@udc.es
Web
Descrición xeral
PENDIENTE DE INCLUIR POR LOS SERVICIOS DE GADU LOS SIGUIENTES PROFESORES DEL INIBIC:
Dra. María José López Armada (MLopArm@canalejo.org)
Materia obligatoria centrada en los cultivos celulares animales y vegetales, así como en los fundamentos y aplicaciones de técnicas de microscopía, análisis de imagen, citometría de flujo y análisis de cromosomas.
Competencias do título
Código
Competencias da titulación
A3
Capacidade de utilizar técnicas e instrumentos habituais na investigación biolóxica celular e molecular: que sexan capaces de manexar as técnicas e protocolos así como comprender as potenciais das mesmas, os seus usos e aplicacións
A4
Capacidade de traballar de xeito seguro nos laboratorios coñecendo os manuais de operacións e as accións ante incidentes de risco
A5
Capacidade de utilizar ferramentas Bioinformáticas a nivel de usuario
A11
Capacidade de ter unha visión integrada dos coñecementos previamente adquiridos en relación coa Bioloxía Molecular, Celular e Xenética, cunha formulación interdisciplinar e un grao de experimentalidad moi elevado
A14
Capacidade de modificar xenes, proteínas e cromosomas con aplicacións biotecnolóxicas
A15
Capacidade de comprender a estrutura, función e evolución dos xenomas e aplicar as ferramentas necesarias para o seu estudio
A16
Capacidade para comprender, detectar e analizar a variación xenética, coñecer os procesos de genotoxicidad e as metodoloxías para a súa avaliación, así como realizar estudos de diagnóstico e risco xenético
A18
Capacidade para integrarse profesionalmente en servizos do sector sanitario, farmacéutico, veterinario, produción animal, biotecnoloxía ou industrias do sector da alimentación
B1
Capacidade de análise e síntese de problemas biolóxicos en relación coa Bioloxía Molecular, Celular e Xenética
B2
Capacidade de toma de decisións para a resolución de problemas: que sexan capaces de aplicar os coñecementos teóricos e prácticos adquiridos na formulación de problemas biolóxicos e a busca de solucións
B3
Capacidade de xestión da información: reunir e interpretar datos, información e resultados relevantes, obter conclusións e emitir informes razoados sobre cuestións científicas e biotecnolóxicas
B4
Capacidade de organización e planificación do traballo: que sexan capaces de xestionar a utilización do tempo así como os recursos dispoñibles e organizar o traballo no laboratorio
B5
Correcta comunicación oral e escrita sobre temas científicos na lingua nativa e polo menos noutra lingua de difusión Internacional a través da lectura de artigos científicos e exposición de traballos
B6
Capacidade de traballo en equipo: que sexan capaces de manter relacións interpersoais eficaces nun contexto de traballo interdisciplinar e internacional con respecto á diversidade cultural
B9
Capacidade de preparación, exposición e defensa dun traballo
C2
Dominar a expresión e a comprensión de forma oral e escrita dun idioma estranxeiro.
C4
Desenvolverse para o exercicio dunha cidadanía aberta, culta, crítica, comprometida, democrática e solidaria, capaz de analizar a realidade, diagnosticar problemas, formular e implantar solucións baseadas no coñecemento e orientadas ao ben común.
C5
Entender a importancia da cultura emprendedora e coñecer os medios ao alcance das persoas emprendedoras.
C6
Valorar criticamente o coñecemento, a tecnoloxía e a información dispoñible para resolver os problemas cos que deben enfrontarse.
C7
Asumir como profesional e cidadán a importancia da aprendizaxe ao longo da vida.
C8
Valorar a importancia que ten a investigación, a innovación e o desenvolvemento tecnolóxico no avance socioeconómico e cultural da sociedade.
Resultados de aprendizaxe
Competencias de materia (Resultados de aprendizaxe)
Competencias da titulación
Conocer las principales técnicas para la observación microscópica y la preparación
de muestras
AI1
BI2 BI3
CM2
Conocer los fundamentos de las técnicas basadas en análisis de imagen
AI1 AI3
CM2
Manejar las principales técnicas que permiten obtener y mantener diferentes
cultivos celulares
AI1 AI2
BI4 BI5 BI9
CM6
Conocer las técnicas de citometría de flujo
AI1
BI2 BI3
CM2
Emplear técnicas citogenéticas para el análisis y manipulación de los cromosomas
AI1 AI2 AI10 AI11 AI12
BI1 BI3
Manejar los aparatos necesarios para las técnicas celulares y moleculares
AI1 AI2
Conocer los protocolos de uso de las diferentes técnicas
AI1 AI2
BI2 BI4 BI6
CM2 CM6
Conocer las aplicaciones de las distintas técnicas
AI1 AI2
BI2 BI4 BI6
CM2 CM6
Plantearse las formas de solucionar problemas metodológicos asociados a la
realización de estas técnicas
AI1
BI1 BI2
Establecer relaciones de uso entre las distintas técnicas y su posible combinación en
la resolución de problemas
AI1 AI8 AI13
BI2
CM4
Interpretar los datos procedentes de observaciones y medidas en el laboratorio
AI1
BI1 BI2
Planificar, diseñar y desarrollar experimentos en relación con las técnicas aprendidas
AI1 AI2 AI13
BI1 BI2 BI3 BI4 BI6
CM6 CM8
Mantener una actitud crítica de perfeccionamiento de la labor experimental
AI1
CM5 CM6 CM7 CM8
Contidos
Temas
Subtemas
Microscopía y análisis de imagen
Fundamentos, técnicas y aplicaciones de microscopía óptica y electrónica.
Microscopía de fluorescencia y de barrido confocal: técnicas avanzadas de fluorescencia y aplicaciones.
Introducción a las técnicas de procesado y análisis de imágen.
Cultivos celulares
Introducción a los cultivos celulares. Tipos de cultivos. Requerimientos de los cultivos celulares. Cuantificación de parámetros celulares. Contaminaciones. Citotoxicidad.
Cultivos in vitro de tejidos vegetales. Callos. Cultivo de células vegetales en suspensión. Embriogénesis somática.
Citometría de flujo
Principios y métodos generales de citometría.
Preparación de muestras y estandarización de protocolos de análisis.
Análisis funcional de células. Determinación de DNA y ciclo celular.
Técnicas Citogenéticas
Obtención de preparaciones cromosómicas y cariotipo. Hibridación in situ convecional. Técnicas avanzadas de hibridación in situ fluorescente (FISH).
Planificación
Metodoloxías / probas
Horas presenciais
Horas non presenciais / traballo autónomo
Horas totais
Sesión maxistral
16
32
48
Prácticas de laboratorio
32
32
64
Traballos tutelados
0
20
20
Proba mixta
2
14
16
Atención personalizada
2
0
2
*Os datos que aparecen na táboa de planificación son de carácter orientativo, considerando a heteroxeneidade do alumnado
Metodoloxías
Metodoloxías
Descrición
Sesión maxistral
Exposición por parte del profesor sobre los fundamentos y aspectos teóricos relacionados con las distintas técnicas empleadas actualmente en Biología Celular
Prácticas de laboratorio
Las prácticas representan una parte indispensable en la asignatura y en ellas se abordarán aspectos prácticos y aplicaciones de las distintas técnicas celulares. Se desarrollarán en laboratorios e instalaciones específicas: laboratorios de la Facultad de Ciencias, laboratorios del Instituto de investigaciones biomédicas (INIBIC), Servicios de Apoyo a la investigación de la UDC (SAI).
Traballos tutelados
Elaboración de trabajos relacionados con algún aspecto de la asignatura: crítica de artículos, revisiones bibliográficas y/o resolución de cuestionarios y problemas sobre aspectos concretos de las técnicas utilizadas.
Proba mixta
Consistirá en una prueba escrita con preguntas tipo test y/o de respuesta corta sobre aspectos teóricos, prácticos y aplicaciones de las técnicas tratadas.
Atención personalizada
Metodoloxías
Traballos tutelados
Descrición
Tutorías personalizadas o en grupo dedicadas a la resoluciónde dudas y a proporcionar orientación sobre la realización de actividades programadas.
Avaliación
Metodoloxías
Descrición
Cualificación
Proba mixta
Realización de una prueba con preguntas de tipo test y preguntas cortas sobre aspectos teóricos y prácticos desarrollados a lo largo de la asignatura.
60
Traballos tutelados
Elaboración y redacción de trabajos y/o resolución de cuestionarios y problemas.
40
Observacións avaliación
La asistencia a las prácticas es condición necesaria para ser evaluado. En caso de no superar la asignatura en la primera oportunidad de la convocatoria, las calificaciones obtenidas en los trabajos tutelados se conservarán para la segunda oportunidad salvo que se quiera repetir aquellos que no se hubieran superado durante el curso. Las matriculas de honor se otorgarán entre los alumnos presentados en la evaluación correspondiente a la primera oportunidad de la convocatoria.
Fontes de información
Bibliografía básica
CULTIVOS CELULARES:
Basra, A.S. (2000). Plant growth regulators in agriculture and horticulture. Their role and commercial uses. Ed. Food Products Press.
Benítez Burraco, A. (2005). Avances recientes en Biotecnología vegetal e ingeniería genética de plantas. Editorial Reverté.
Boulton, A.A. e col. (1992). Practical cell culture techniques. Humana Press.
Collin, H.A. e Edwars, S. (1998). Plant cell culture. Guilford Bios Scientific Publishers.
Doyle, A. e Griffiths, J.B. (2000). Cell and tissue culture for medical research. John Wiley and Sons.
Fedoroff, S. e Richardson, A. (1992). Protocols for neural cell culture. Humana Press.
Freshney, R.I. (2010). Culture of animal cells. A manual of basic technique and specialized applications. Wiley-Liss, Inc. 6ª Edition.
Hammond, J., McGarvey, P., Yusibov, V. (1999). Plant Biotechnology. New products and Applications. Springer verlag.
Loyola-Vargas, V.M. e Vázquez-Flota F. (2006). Plant cell culture protocols. Humana Press. 2nd Edition.
Pollard, J.W. e Walker, J.M. (1997). Basic cell culture protocols. Humana Press.
Shaw, A.J. (1996). Epithelial cell culture. A practical approach. Oxford University Press.
Taji, A., Kumar, P., Lakshmanan, P. (2002). In vitro plant breeeding. Food Products Press.
Trigiano, R.N. e Gray, D.J. (2004). Plant development and biotechnology. CRC Press.
Tzfira, T. e Citovsky, V. (2006). Agrobacterium-mediated genetic transformation of plants: biology and biotechnology. Curr. Opin. Biotechnol. 17:147–154.
TÉCNICAS DE MICROSCOPÍA Y ANÁLISIS DE LA IMAGEN
Watt, Ian M. 1996. The principles and practice of electron microscopy. Cambridge University Press
Hoppert, M. 1998. Electron microscopy in microbiology. Bios Scientific Publishers
Bozzola, John J. 1999.Electron microscopy : principles and techniques for biologists. Jones and Bartlett Publishers.
Dykstra, Michael J. 2003. Biological electron microscopy theory, techniques, and troubleshooting. Kluwer Academic/Plenum Publishers
Robin Harris. 1991. Electron microscopy in biology a practical approach. Oxford University Press.
Hunter, Elaine Evelyn. 1984. Practical electron microscopy a beginner's illustrated guide. Praeger, cop.
Slayter, Elizabeth M. 2000. Light and electron microscopy. Cambridge University Press
Herman, B. 1998. Fluorescence microscopy. Bios Scientific Publishers
Donat-P. Häder. 1992. Image analysis in biology. CRC Press, cop.
Pertusa, JF. Técnicas de Análisis de imagen. Aplicaciones en Biología. Publicaciones de la Universidad de Valencia. 2003
CITOMETRÍA DE FLUJO
Lloyd, D. (ed.). Flow cytometry in microbiology. Springer-Verlag. London, 1993.
Shapiro, H.M.Practical flow cytometry. Wiley-Liss. 3a ed. New York, 1995.
Ormerod, M.G. (ed.) Flow Cytometry: A Practical Approach. 2a Ed. IRL Practical Approach series. Oxford University Press, 1990.
Reckermann, M.; Colijn, F. (eds.) Aquatic flow cytometry: achievements and prospects. Institut de Ciències del Mar, Consejo Superior de Investigaciones Científicas. Barcelona, 2000.
TECNICAS CITOGENÉTICAS
Czepulkowski, B. (2001) Analyzing chromosomes. BIOS Scientific Publishers, Oxford.
Gosden, J.R. (1994). Chromosome analysis protocols. Humana Press, Totowa (New Jersey).
Liehr, T. (2006). Multicolor FISH in human cytogenetics. Karger, Basel.
Liehr, T. (2009). Fluorescence in situ hybridization (FISH)-application guide. Springer-Verlag, Berlin.
Leitch, A.R., Schwarzacher, T., Jackson, D. (1994). In situ hybridization: a practical guide. Bios Scientific Publishers, Oxford.
Verma, R.S. e Babu, A. (1989). Human chromosomes: manual of basic techniques. Pergamon Press, New York.
Bibliografía complementaria
- Artículos científicos sobre temas relacionados con la asignatura proporcionados a través de la plataforma Moodle.
(*)A Guía docente é o documento onde se visualiza a proposta académica
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