O exame final da primeira oportunidade, coincidirá co luns seguinte á finalización da materia.

O 50 % da nota correspondera a parte de Xenomica e o outro 50 % a Proteomica.

Os alumnos realizaran dous traballos tutelados un de Xenomica e outro de Proteomica, suporán un 10 % da nota

A hora de conceder as matrículas de honra darase prioridade aos alumnos que acadaran as máximas calificacións na primeira oportunidade

Competencias de materia (Resultados de aprendizaxe)	Competencias da titulación
Coñecer os protocolos de uso das diferentes técnicas	AM4
Coñecer as aplicacións das distintas técnicas	AM4 AM6
Establecer relacións de uso entre as distintas técnicas e a sua posible combinación para a resolución de problemas	AM4 AM6	BM1 BM5
Interpretar os datos procedentes das observacións e medidas no laboratorio	AM6 AM7	BM1 BM13	CM8
Planificar, deseñar e desenrolar experimentos en relación coas técnicas aprendidas	AM4 AM5 AM6	BM1 BM2 BM5	CM1 CM8
Familiarización con revistas científicas, con bases de datos de secuencias, con programas de análise e con ferramentas biotecnolóxicas	AM7	BM1 BM3	CM3
Capacidade de análise e crítica de traballos de investigación, publicados en revistas científicas internacionais	AM7	BM1 BM3 BM13	CM2
Coñecer os principios da xenómica e a proteómica	AM5	BM1 BM13

Temas	Subtemas
1.Bloque: Xenómica	Tema 1. Introducción a xenómica: bases, conceptos e técnicas. Tema 2. Proxectos “xenoma”. Tema 3. Transcritómica: Microoarrays e Microchips: Microrrays de DNA (metodoloxía, tipos de plataformas, deseño experimental, análisis dos datos). Tema4. PCR cuantitativa en tempo real: metodoloxía e aplicacion para a detección de microorganismos, análisis de mutacion e de expresión xénica en microorganismos. Tema 5. Xenómica estructural e funcional.
2. Bloque: Proteómica	Tema 1. Técnicas de estudo de proteínas: Preparación de extractos proteicos. Tema 2. Electroforese mono e bidimensional de proteínas. Tema 3. Electroforese capilar mediante isoelectroenfoque. Tema 4. Técnicas inmunolóxicas de análise de proteínas. Tema 5. Tecnicas cromatográficas (Exclusión molecular, Afinidade, IMAC, Intercambio iónico, Hidrofóbica). Tema 6. Espectrometría de masas (MALDI-TOF, É) Identificación de proteínas mediante pegada peptídica. Tema 7. Espectrometría de masas en tándem (MS/MS): secuenciación de péptidos. Tema 8. Modificacións post-traduccionales. Tema9. Análise de complexos proteicos.Chips de proteínas. Tema 10. Proteómica de expresión diferencial en xel, DIGE e Proteómica de expresión sen xel: ICAT, iTRAQ, SILAC

Metodoloxías / probas	Horas presenciais	Horas non presenciais / traballo autónomo	Horas totais
Prácticas de laboratorio	12.5	12.5	25
Sesión maxistral	25	50	75
Proba mixta	2	4	6
Traballos tutelados	0	4.5	4.5

Atención personalizada	2	0	2

*Os datos que aparecen na táboa de planificación son de carácter orientativo, considerando a heteroxeneidade do alumnado

Metodoloxías	Descrición
Prácticas de laboratorio	Clases prácticas no laboratorio, na aula de informática, resolución de problemas e casos prácticos
Sesión maxistral	Impartidas polo profesor ou/e exposición de traballos do alumno
Proba mixta	Exámenes con cuestións sobre os contidos teóricos e prácticos
Traballos tutelados	Traballos e/ou resolución de cuestionarios relacionados con algún aspecto da asignatura. Realizaránse de maneira individual ou en grupo baixo a orientación do profesor.

Metodoloxías	Descrición	Cualificación
Proba mixta	Consistirá nun exámen con cuestions nas que o alumno terá que aplicar os coñecementos teóricos e prácticos adquiridos na asignatura	60
Prácticas de laboratorio	Valorarase o traballo nas diferentes sesións de prácticas e a resolución problemas	30
Traballos tutelados	Redacción de traballos e/ou resolución de cuestionarios	10

Observacións avaliación
O exame final da primeira oportunidade, coincidirá co luns seguinte á finalización da materia. O 50 % da nota correspondera a parte de Xenomica e o outro 50 % a Proteomica. Os alumnos realizaran dous traballos tutelados un de Xenomica e outro de Proteomica, suporán un 10 % da nota A hora de conceder as matrículas de honra darase prioridade aos alumnos que acadaran as máximas calificacións na primeira oportunidade

Bibliografía básica	Mackay, I. M. (2007). Real-time PCR in microbiology : from diagnosis to characterisation . Norfolk: Caister Academic Press. Edwards, K., Logan J. & Saunders, N. (2004). Real-time PCR: an essential guide. . Horizon bioscien Andreas Manz, Nicole Pamme y Dimitri Lossifidis (2004). Bioanalytical Chemistry . Imperial College Press Luque, J. & Herráez, A. (2001). Biología Molecular e Ingeniería Genética. Harcourt Voet, D., Voet, J. & Voet, C. W. (2007). Fundamentos de bioquímica. Medica paramericana Hartwell, L. (2008). Genetics: from genes to genome. McGrawhill Richard J. Simpson, (2003). Proteins and Proteomics: A laboratory manual. CSHL Press Speed, T. (2003). Statistical Analysis of Gene Expression Microarray Data. Chapman & Hall/CRC

Bibliografía complementaria	Recursos web (). Bioconductor, http://www.bioconductor.org/. Gentleman, R., Carey, V. J., Huber, W., Irizarry, R. A. & Dudoit, S. (2005). Bioinformatics and Computational Biology Solutions using R and Bioconductor. Springer Recurso web (). http://genomebiology.com/2004/5/10/R80. Recurso web (). Página web de R: http://www.r-project.org/. García Miranda, C. M. (1997). Perspectiva ética y jurídica del proyecto Genoma Humano. UDC

Observacións
Dado que parte da bibliografía recomendada para esta materia atópase en inglés, e recomendable ter coñecementos desta lengua, polo menos, a nivel de comprensión de textos escritos.