Datos Identificativos 2019/20
Asignatura (*) Técnicas Celulares Código 610441001
Titulación
Mestrado Universitario en Bioloxía Molecular , Celular e Xenética
Descriptores Ciclo Periodo Curso Tipo Créditos
Máster Oficial 1º cuatrimestre
Primero Obligatoria 6
Idioma
Castellano
Gallego
Inglés
Modalidad docente Presencial
Prerrequisitos
Departamento Bioloxía
Departamento profesorado máster
Coordinador/a
Yañez Sanchez, Julian
Correo electrónico
julian.yanez@udc.es
Profesorado
Bernal Pita da Veiga, angeles
Castro Castro, Antonio Manuel
Folgueira Otero, Mónica
Insua Pombo, Ana Maria
López Armada, María José
Rioboo Blanco, Carmen
Yañez Sanchez, Julian
Correo electrónico
angeles.bernal@udc.es
antonio.castro@udc.es
m.folgueira@udc.es
ana.insua@udc.es
carmen.rioboo@udc.es
julian.yanez@udc.es
Web http://https://campusvirtual.udc.es/moodle/
Descripción general Materia obrigatoria centrada nos cultivos celulares animais e vexetais, así como nos fundamentos e aplicacións de técnicas de microscopía, análise de imaxe, citometría de fluxo e análise de cromosomas.

Pendente de incluir polos servicios de GADU, a profesora do INIBIC Dra. Dna. María José López Armada (MA.Jose.Lopez.Armada@sergas.es).
Plan de contingencia

Competencias del título
Código Competencias del título
A1 Capacidad de utilizar técnicas e instrumentos habituales en la investigación biológica celular y molecular: que sean capaces de manejar las técnicas y protocolos así como comprender las potenciales de las mismas, sus usos y aplicaciones.
A2 Capacidad de trabajar de forma segura en los laboratorios conociendo los manuales de operaciones y las acciones ante incidentes de riesgo.
A13 Capacidad para integrarse profesionalmente en servicios del sector sanitario, farmacéutico, veterinario, producción animal, biotecnología o industrias del sector de la alimentación.
B3 Capacidad de gestión de la información: que sean capaces de reunir e interpretar datos, información y resultados relevantes, obtener conclusiones y emitir informes razonados sobre cuestiones científicas y biotecnológicas.
B4 Capacidad de organización y planificación del trabajo: que sean capaces de gestionar la utilización del tiempo así como los recursos disponibles y organizar el trabajo en el laboratorio.

Resultados de aprendizaje
Resultados de aprendizaje Competencias del título
Conocer los fundamentos teóricos en los que se basan técnicas relativas a microscopía (y análisis de imagen), cultivos celulares (vegetales y animales), citometría de flujo y citogenética AI1
AI2
Adquirir las destrezas básicas en el manejo y uso del aparataje e instrumental requerido para el desarrollo de técnicas celulares AI1
AI2
AI13
Conocer las aplicaciones de las distintas técnicas celulares AI1
Diseñar, planificar y desarrollar experimentos en relación con las técnicas aprendidas AI1
AI2
BI3
BI4

Contenidos
Tema Subtema
Microscopía y análisis de imagen Fundamentos, técnicas y aplicaciones de microscopía óptica y electrónica.
Microscopía de fluorescencia y de barrido confocal: técnicas avanzadas de fluorescencia y aplicaciones.
Introducción a las técnicas de procesado y análisis de imagen.
Cultivos celulares Introducción a los cultivos celulares. Tipos de cultivos. Requerimientos de los cultivos celulares. Cuantificación de parámetros celulares. Contaminaciones. Citotoxicidad.
Cultivos in vitro de tejidos vegetales. Callos. Cultivo de células vegetales en suspensión.
Citometría de flujo Principios y métodos generales de citometría.
Preparación de muestras y estandarización de protocolos de análisis.
Análisis funcional de células.
Técnicas Citogenéticas Obtención de preparaciones cromosómicas y cariotipo. Hibridación in situ convencional. Técnicas avanzadas de hibridación in situ fluorescente (FISH).

Planificación
Metodologías / pruebas Competéncias Horas presenciales Horas no presenciales / trabajo autónomo Horas totales
Sesión magistral A1 14 28 42
Prácticas de laboratorio A1 A2 A13 B3 B4 28 42 70
Trabajos tutelados A1 B3 0 19 19
Prueba mixta A1 B3 2 15 17
 
Atención personalizada 2 0 2
 
(*)Los datos que aparecen en la tabla de planificación són de carácter orientativo, considerando la heterogeneidad de los alumnos

Metodologías
Metodologías Descripción
Sesión magistral Exposición por parte del profesor sobre los fundamentos y aspectos teórico-prácticos relacionados con las distintas técnicas empleadas en Biología Celular.
Prácticas de laboratorio Las prácticas representan una parte indispensable de la asignatura y en ellas se abordarán aspectos prácticos y aplicaciones de las distintas técnicas celulares. Se desarrollarán en laboratorios e instalaciones específicas: laboratorios de la Facultad de Ciencias, laboratorios del Instituto de investigaciones biomédicas (INIBIC) y Servicios de Apoyo a la investigación (SAI) de la UDC.
El alumno desarrollará protocolos de laboratorio y asistirá a demostraciones de uso de equipos de investigación.
Trabajos tutelados Elaboración de trabajos y/o resolución de cuestionarios y problemas sobre aspectos concretos de las técnicas utilizadas.
Prueba mixta Consistirá en una prueba escrita con preguntas tipo test y/o de respuesta corta sobre aspectos teóricos, prácticos y aplicaciones de las técnicas tratadas.

Atención personalizada
Metodologías
Trabajos tutelados
Descripción
Tutorías personalizadas o en grupo dedicadas a la resolución de dudas y a proporcionar orientación sobre las actividades programadas. Las tutorías personalizadas podrán realizarse por vía telefónica y/o telemática.

Evaluación
Metodologías Competéncias Descripción Calificación
Prueba mixta A1 B3 Se valorará la adquisición de conocimientos sobre los fundamentos teóricos y aplicaciones, claridad de las explicaciones, capacidad de integrar y relacionar la información tratada y la capacidad de interpretar datos y resolver problemas. 50
Prácticas de laboratorio A1 A2 A13 B3 B4 Se valorará la implicación, la destreza en las tareas planificadas y el conocimiento de los riesgos potenciales que conlleva el desarrollo de las mismas. 20
Trabajos tutelados A1 B3 Se valorará la capacidad de diseñar y planificar experimentos, interpretar datos y/o resolver cuestionarios. 30
 
Observaciones evaluación

La asistencia a las prácticas es condición necesaria para ser evaluado. En caso de no superar la asignatura en la primera oportunidad de la convocatoria, las calificaciones obtenidas en los trabajos tutelados y prácticas se conservarán para la segunda oportunidad. Las matriculas de honor se otorgarán preferentemente entre los alumnos presentados en la evaluación correspondiente a la primera oportunidad de la convocatoria. Los criterios de evaluación indicados se aplicarán a las dos modalidades de matrícula, presencial y semipresencial.


Fuentes de información
Básica

CULTIVOS CELULARES

Basra, A.S. (2000). Plant growth regulators in agriculture and horticulture. Their role and commercial uses. Ed. Food Products Press.

Benítez Burraco, A. (2005). Avances recientes en Biotecnología vegetal e ingeniería genética de plantas. Editorial Reverté.

Boulton, A.A. e col. (1992). Practical cell culture techniques. Humana Press.

Butler, M. (2008). Animal cell culture and technology. Taylor & Francis, 2nd edition.

Collin, H.A. e Edwars, S. (1998). Plant cell culture. Guilford Bios Scientific Publishers.

Davis, J.M. (2011). Animal cell culture. Essential methods. Wiley-Blackwell.

Doyle, A. e Griffiths, J.B. (2000). Cell and tissue culture for medical research. John Wiley and Sons.

Fedoroff, S. e Richardson, A. (1992). Protocols for neural cell culture. Humana Press.

Freshney, R.I. (2010). Culture of animal cells. A manual of basic technique and specialized applications. Wiley-Liss, Inc. 6ª Edition.

Hammond, J., McGarvey, P., Yusibov, V. (1999). Plant Biotechnology. New products and Applications. Springer verlag.

Loyola-Vargas, V.M. e Vázquez-Flota F. (2006). Plant cell culture protocols. Humana Press. 2nd Edition.

Pollard, J.W. e Walker, J.M. (1997). Basic cell culture protocols. Humana Press.

Shaw, A.J. (1996). Epithelial cell culture. A practical approach. Oxford University Press.

Taji, A., Kumar, P., Lakshmanan, P. (2002). In vitro plant breeeding. Food Products Press.

Trigiano, R.N. e Gray, D.J. (2004). Plant development and biotechnology. CRC Press.

Tzfira, T. e Citovsky, V. (2006). Agrobacterium-mediated genetic transformation of plants: biology and biotechnology. Curr. Opin. Biotechnol. 17:147–154.

Vunjak-Novakovic, G. & Freshney, R.I. (2006). Culture of cells for tissue engineering. Wiley-Liss, Inc.

TÉCNICAS DE MICROSCOPÍA Y ANÁLISIS DE IMAGEN

Watt, Ian M. 1996. The principles and practice of electron microscopy. Cambridge University Press

Hoppert, M. 1998. Electron microscopy in microbiology. Bios Scientific Publishers

Bozzola, John J. 1999.Electron microscopy : principles and techniques for biologists. Jones and Bartlett Publishers.

Dykstra, Michael J. 2003. Biological electron microscopy theory, techniques, and troubleshooting. Kluwer Academic/Plenum Publishers

Robin Harris. 1991. Electron microscopy in biology a practical approach.  Oxford University Press.

Hunter, Elaine Evelyn. 1984. Practical electron microscopy a beginner's illustrated guide. Praeger, cop.

Slayter, Elizabeth M. 2000.  Light and electron microscopy. Cambridge University Press

Herman, B. 1998. Fluorescence microscopy. Bios Scientific Publishers

Donat-P. Häder. 1992. Image analysis in biology. CRC Press, cop.

Pertusa, JF. (2003). Técnicas de Análisis de imagen. Aplicaciones en Biología. Publicaciones de la Universidad de Valencia.

CITOMETRÍA DE FLUJO

Ormerod, M.G. (2009). Flow Cytometry: A Basic Introduction. 2a Ed. IRL Practical Approach series. Oxford University Press.

Shapiro, H.M. (2004). Practical flow cytometry. Wiley-Liss. 4a ed. New York.

TECNICAS CITOGENÉTICAS

Czepulkowski, B. (2001) Analyzing chromosomes. BIOS Scientific Publishers, Oxford.

Gosden, J.R. (1994). Chromosome analysis protocols. Humana Press, Totowa (New Jersey).

Liehr, T. (2006). Multicolor FISH in human cytogenetics. Karger, Basel.

Liehr, T. (2009). Fluorescence in situ hybridization (FISH)-application guide. Springer-Verlag, Berlin.

Leitch, A.R., Schwarzacher, T., Jackson, D. (1994). In situ hybridization: a practical guide. Bios Scientific Publishers, Oxford.

Verma, R.S. e Babu, A. (1989). Human chromosomes: manual of basic techniques. Pergamon Press, New York.

Complementária

- Artículos científicos sobre temas relacionados con la asignatura proporcionados a través de la plataforma Moodle.


- Páginas web


General
PubMed: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/sites/pubmed

Cultivos Celulares
-http://www.cultek.com/aplicaciones.asp?P=Aplicacion_Cultivos_Celulares&opc=introduccion

Citometría
-Cytometry: http:www3.interscience.wiley.com/cgi-bin/jhome/33945

Microscopía y Análisis de imagen
http://zeiss-campus.magnet.fsu.edu/index.html
http://www.microscopyu.com/tutorials/
http://www.olympusfluoview.com/index.html
http://w3.uniroma1.it/MEDICFISIO/microscopy.htm
http://rsbweb.nih.gov/ij/index.html
http://www.invitrogen.com/site/us/en/home/support/Research-Tools/Fluorescence-SpectraViewer.html


Recomendaciones
Asignaturas que se recomienda haber cursado previamente

Asignaturas que se recomienda cursar simultáneamente

Asignaturas que continúan el temario

Otros comentarios


(*) La Guía Docente es el documento donde se visualiza la propuesta académica de la UDC. Este documento es público y no se puede modificar, salvo cosas excepcionales bajo la revisión del órgano competente de acuerdo a la normativa vigente que establece el proceso de elaboración de guías