Datos Identificativos 2019/20
Asignatura (*) Técnicas Moleculares Código 610441002
Titulación
Mestrado Universitario en Bioloxía Molecular , Celular e Xenética
Descriptores Ciclo Periodo Curso Tipo Créditos
Máster Oficial 1º cuatrimestre
Primero Obligatoria 6
Idioma
Castellano
Gallego
Inglés
Modalidad docente Presencial
Prerrequisitos
Departamento Bioloxía
Departamento profesorado máster
Coordinador/a
Rodriguez Torres, Ana Maria
Correo electrónico
ana.rodriguez.torres@udc.es
Profesorado
Diaz Varela, Jose
Lamas Maceiras, Mónica
Martinez Martinez, M. Luisa
Pomar Barbeito, Federico
Rego Perez, Jose Ignacio
Rodriguez Torres, Ana Maria
Silvar Pereiro, Cristina
Correo electrónico
jose.diaz.varela@udc.es
monica.lamas@udc.es
m.l.martinez@udc.es
federico.pomar@udc.es
ana.rodriguez.torres@udc.es
c.silvar@udc.es
Web http://ciencias.udc.es/masters-bcm/master-en-biología-molecular-y-celula
Descripción general

Competencias del título
Código Competencias del título
A1 Capacidad de utilizar técnicas e instrumentos habituales en la investigación biológica celular y molecular: que sean capaces de manejar las técnicas y protocolos así como comprender las potenciales de las mismas, sus usos y aplicaciones.
A2 Capacidad de trabajar de forma segura en los laboratorios conociendo los manuales de operaciones y las acciones ante incidentes de riesgo.
A3 Capacidad de utilizar herramientas Bioinformáticas a nivel de usuario.
A4 Capacidad para aplicar las técnicas moleculares al estudio de la célula vegetal y su fisiología, su respuesta a estímulos externos y sus aplicaciones biotecnológicas.
A5 Capacidad de comprender el papel de los microorganismos como agentes patógenos y como herramientas biotecnológicas
A8 Capacidad de tener una visión integrada de los conocimientos previamente adquiridos en relación con la Biología Molecular, Celular y Genética, con un planteamiento interdisciplinar y un grado de experimentalidad muy elevado.
A9 Capacidad de comprender la estructura, y función de las proteínas a nivel individual y de la proteómica, así como de las técnicas necesarias para analizarlas y estudiar sus interacciones con otras biomoléculas
A10 Capacidad de modificar genes, proteínas y cromosomas con aplicaciones biotecnológicas
A12 Capacidad para comprender, detectar y analizar la variación genética, conocer los procesos de genotoxicidad y las metodologías para su evaluación, así como realizar estudios de diagnóstico y riesgo genético.
A13 Capacidad para integrarse profesionalmente en servicios del sector sanitario, farmacéutico, veterinario, producción animal, biotecnología o industrias del sector de la alimentación.
B1 Capacidad de análisis y síntesis de problemas biológicos en relación con la Biología Molecular, Celular y Genética.
B2 Capacidad de toma de decisiones para la resolución de problemas: que sean capaces de aplicar los conocimientos teóricos y prácticos adquiridos en la formulación de problemas biológicos y la búsqueda de soluciones.
B3 Capacidad de gestión de la información: que sean capaces de reunir e interpretar datos, información y resultados relevantes, obtener conclusiones y emitir informes razonados sobre cuestiones científicas y biotecnológicas.
B4 Capacidad de organización y planificación del trabajo: que sean capaces de gestionar la utilización del tiempo así como los recursos disponibles y organizar el trabajo en el laboratorio.
C6 Adquirir habilidades para la vida y hábitos, rutinas y estilos de vida saludables.

Resultados de aprendizaje
Resultados de aprendizaje Competencias del título
Manejar los aparatos necesarios para las técnicas celulares y moleculares. AI1
AI2
Conocer los protocolos de uso de las diferentes técnicas. AI1
AI2
Conocer las aplicaciones de las distintas técnicas. AI1
AI4
AI5
AI13
BI2
CM6
Plantearse las formas de solucionar problemas metodológicos asociados a la realización de las técnicas. BI1
Establecer las relaciones de uso entre las distintas técnicas y su posible combinación para la resolución de problemas. BI1
Interpretar los datos procedentes de las observaciones y medidas en el laboratorio. BI3
Planificar, diseñar y desarrollar experimentos en relación con las técnicas aprendidas. BI2
BI4
Mantener una actitud crítica de perfeccionamento de la labor experimental. CM6
Relacionar las propiedades químicas y estructurales de las biomoléculas con las técnicas de laboratorio que sean mas adecuadas para su aislamiento, purificación y caracterización. AI1
AI9
BI1
BI2
Conocer en profundidad las posibilidades y características de la PCR y la PCR en tiempo real. AI2
BI3
BI4
Comprender y manejar las técnicas de DNA recombinante que pueden utilizarse para el análisis y manipulación de las biomoléculas. AI1
AI2
AI8
AI10
BI2
Utilizar métodos y técnicas para detectar y analizar la variación genética. AI1
AI3
AI12
BI3

Contenidos
Tema Subtema
Purificación de biomoléculas Principios de las técnicas de centrifugación e instrumentación. Centrifugación analítica y preparativa
Técnicas cromatográficas: principios y criterios de selección
Fundamentos de la electroforesis. Tipos de electroforesis. Isoelectroenfoque. Electroforesis capilar.
PCR Conceptos avanzados de PCR
Diferencias entre PCR y PCR en tiempo real
Métodos de detección de amplicóns
Diseño de ensayos y análisis de resultados
Tecnología de los marcadores moleculares Marcadores moleculares: concepto y características generales
Principio, desarrollo y genotipado de RFLPs, AFLPs, microsatélites y SNPs
DNA Recombinante Enzimas y protocolos utilizados en las técnicas de DNA recombinante
Genotecas genómicas
Genotecas de expresión
Análisis de genotecas
Técnicas de transferencia y Blotting
Secuenciación
Técnicas de mutagénesis dirigida
Silenciamento
Usos y aplicación de organismos transgénicos

Planificación
Metodologías / pruebas Competéncias Horas presenciales Horas no presenciales / trabajo autónomo Horas totales
Sesión magistral A1 A4 A5 A10 A13 14 14 28
Prácticas de laboratorio A1 A2 A3 A12 B4 24 48 72
Trabajos tutelados A1 A3 A8 A9 B1 B3 B2 0 42 42
Prueba mixta A1 A3 A9 A12 B1 B2 C6 2 4 6
 
Atención personalizada 2 0 2
 
(*)Los datos que aparecen en la tabla de planificación són de carácter orientativo, considerando la heterogeneidad de los alumnos

Metodologías
Metodologías Descripción
Sesión magistral Impartidas por los Profesores y/o exposición de trabajos del alumno.
Prácticas de laboratorio Clases prácticas en el laboratorio, resolución de problemas y casos prácticos.
Trabajos tutelados Trabajo Tutelado relacionado con las técnicas realizadas en el laboratorio de prácticas. Se realizarán de manera individual bajo la orientación del profesor.
Prueba mixta Exámenes con cuestiones sobre los contenidos teóricos y prácticos.

Atención personalizada
Metodologías
Trabajos tutelados
Sesión magistral
Prácticas de laboratorio
Descripción
Tutorías personalizadas centradas en la orientación para la realización de un trabajo tutelado, resolución de dudas y aclaraciones.

El horario de TUTORÍAS se especificará al inicio del curso. Los alumnos también podrán solicitar cita y resolver dudas concretas por teléfono o vía telemática.

Evaluación
Metodologías Competéncias Descripción Calificación
Trabajos tutelados A1 A3 A8 A9 B1 B3 B2 Elaboración y redacción de un trabajo tutelado. 30
Prácticas de laboratorio A1 A2 A3 A12 B4 En las diferentes sesiones de prácticas, los alumnos resolverán situaciones y problemas, resolución de cuestionarios, que formarán parte de la evaluación continua de la asignatura. 20
Prueba mixta A1 A3 A9 A12 B1 B2 C6 Consistirá en un examen con cuestiones en las que el alumno tendrá que aplicar los conocimientos teóricos y prácticos adquiridos en la asignatura. 50
 
Observaciones evaluación
.-Los criterios de evaluación indicados se aplicarán a las dos modalidades de matrícula (presencial y semipresencial).

.-La asistencia a las prácticas es condición necesaria para ser evaluado.

.-En caso de no superar la materia en el examen de la 1ª oportunidad de la convocatoria (Enero), las calificaciones obtenidas de los trabajos tutelados y prácticas se conservarán para la 2ª oportunidad (Julio), y en las Actas aparecerá la calificación de 4.

.-Las matrículas de honor se otorgarán preferentemente entre los alumnos presentados en la evaluación correspondiente a la 1ª oportunidad de la convocatoria, según la normativa de Calificaciones y Actas en los Grados y Másteres.

.-Los alumnos que no se presenten a las pruebas oficiales tendrán un No Presentado en Actas.


Fuentes de información
Básica M. L. Marina, A. Ríos, M. Valcárcel (2005). Analysis and detection by capillary electrophoresis . Amsterdam : Elsevier
Westermeier, Reiner. (2005). Electrophoresis in practice : a guide to methods and applications of DNA and protein separations. Weinheim : Wiley-VCH
Weiner MP, Gabriel SB, Stephens JC, (2007). Genetic variation: a laboratory manual. Cold Spring harbor Laboratory Press, New York.
Brown TA (2008). Genomes (3º ed). . Médica Panamericana, Buenos Aires.
Morteza G. Khaledi (1998). High-performance capillary electrophoresis theory, techniques, and applications . New York : John Wiley & Sons,
Nuez F, Carrillo JM, (2000). Los marcadores genéticos en la mejora vegetal.. Universidad Politécnica de Valencia.
Avise CJ (2004). Molecular markers, natural history, and evolution (2ª ed.). . Sinauer Associates, Sunderland, MA.
Keith Wilson and John Walker (1995). Principles and Techniques of Practical Biochemistry. Cambridge, University Press
Dorak, T. (2007). Real-Time PCR. Routledge Taylor and Francis.
Mackay, I. M. (2007). Real-time PCR in microbiology : from diagnosis to characterisation. Norfolk: Caister Academic Press.
Edwards, K., Logan J. & Saunders, N. (2004). Real-time PCR: an essential guide.. Horizon bioscience.
Logan J, Edawards K, Saunders N. (2009). Real-Time PCR: Current Technology and applications.. Caister Academic Press

Complementária

Además se proporcionarán artículos científicos de revisión sobre los temas tratados en la asignatura en la plataforma virtual Moodle


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