Para ser evaluado es imprescindible realizar las pruebas sobre teoría (prueba mixta), prácticas de laboratorio y prácticas TIC.

Para superar la materia debe alcanzarse un 5 y tener >4 en las pruebas mixtas y una calificación media en las prácticas >4. Si la calificación resultante de la suma de todas las actividades evaluables fuese igual o superior a 5, pero no se reuniesen los requisitos indicados, la calificación sería 4,9 (suspenso).

Se considera No Presentado (NP) cuando el alumno no se presente al examen del período oficial de evaluación.

Las matrículas de honor se otorgarán preferentemente entre los alumnos que alcancen la calificación igual o superior a 9 en la primera oportunidad de la convocatoria (enero).

Se realizará un examen parcial y en caso de tener una calificación mayor de 4 no tendrá que repetirse en las oportunidades de enero y julio.

En la segunda oportunidad (julio) se podrá optar por: (A) asumir los criterios de evaluación de la primera oportunidad (especificados en el apartado EVALUACIÓN); o (B) realizar las pruebas correspondientes a la teoría (prueba mixta), prácticas de laboratorio y TIC, representando en este caso un 65% la prueba mixta. La elección de la opción B deberá ser comunicada 10 días antes de la fecha del examen.

En el caso de alumnado con dedicación a tiempo parcial y dispensa de exención de asistencia, podrán adoptarse medidas adicionales para que se pueda superar la materia, tales como flexibilidad en el horario de prácticas o realización de una prueba global de evaluación de los resultados del aprendizaje.

Los estudiantes que soliciten la convocatoria adelantada de diciembre podrán escoger entre la aplicación de la guía docente en vigor o del curso anterior.

La realización fraudulenta de pruebas o actividades de evaluación, una vez comprobada, implicará directamente la calificación de "0" en la oportunidad correspondiente.

Resultados de aprendizaje	Competencias del título
Conocimiento de la base molecular de la organización, expresión, variación y manipulación del material genético.	A11 A12 A15 A29	B1 B2 B3 B5 B7
Conocimientos de las metodologías básicas empleadas en Genética Molecular.	A5 A8 A11 A12 A15 A29 A30 A31	B1 B2 B3 B5
Manejo de fuentes de información de interés en Genética Molecular.	A5 A11 A12 A15 A29	B1 B2 B3
Capacidad de transmitir e interpretar información propia de la Genética Molecular.	A29	B1 B2 B3 B5 B7

Tema	Subtema
1.- REPLICACIÓN DEL DNA.	Replicación semiconservativa del DNA: experimentos de Meselson y Stahl. Modos de replicación. Enzimología de la replicación. Replicación del DNA de Escherichia coli. Replicación del DNA de eucarióticas. Síntesis de telómeros. Replicación del DNA mitocondrial y cloroplástico.
2.- SÍNTESIS Y PROCESAMENTO DEL RNA.	Clases de RNA. RNA polimerasas. Promotores y aparato de transcripción. Transcripción en procariotas y eucariotas: iniciación, elongación y terminación. Genes interrumpidos: exones e intrones. Procesamiento del pre-mRNA eucariota. Síntesis y procesamiento del pre-rRNA. Síntesis y procesamiento del pre-tRNA. Edición del RNA. Revisión del concepto de gen.
3.- TRADUCCIÓN.	Dogma central de la biología molecular. Ribosomas y tRNAs. Ciclo de traducción: iniciación, elongación y terminación. Código genético y descodificación genética. Reacción de la peptidil transferasa. Conservación filogenética del rRNA. Papel del rRNA en la iniciación. Papel del RNA en la descodificación. Papel del RNA en la actividad peptidil transferasa. La hipótesis del mundo de RNA.
4.- MUTACIÓN Y REPARACIÓN DEL DNA.	Base molecular de las mutaciones espontáneas: errores en la replicación; entrecruzamiento desigual; cambios químicos espontáneos. Base molecular de las mutaciones inducidas: agentes físicos y químicos. Mecanismos de reparación del DNA: reversión del daño; reparación por escisión; reparación de apareamientos erróneos; reparación de roturas de doble cadena; síntesis de translesión.
5.- MECANISMO MOLECULAR DE LA RECOMBINACIÓN.	Papel de la recombinación. Conversión génica. Modelos de recombinación homóloga: modelo de Holliday y modelo de doble rotura. Enzimología de la recombinación. Recombinación específica de sitio. Ensamblaje de los genes de inmunoglobulinas.
6.- ELEMENTOS GENÉTICOS TRANSPONIBLES.	Elementos genéticos transponibles de procariotas: secuencias de inserción, transposones compuestos y no compuestos. Transposición replicativa y no replicativa. Elementos genéticos transponibles de eucarióticas: transposones y retrotransposones. Significado evolutivo de los elementos genéticos transponibles.
7.- TECNOLOGÍA DEL DNA RECOMBINANTE.	Enzimas de restricción. Vectores de clonación. Genotecas de DNA: construcción y rastreo. Southern y Norther blot. PCR. Mapas de restricción. Secuenciación de DNA. Mutagénesis dirigida.
8.- APLICACIONES DE LA TECNOLOGÍA DEL DNA RECOMBINANTE.	Expresión de genes eucarióticos en bacterias. Transferencia de DNA a células eucarióticas. Animales transgénicos. Plantas transgénicas. Terapia génica. Diagnóstico genético. Edición del genoma: tecnología CRISPR/Cas9.
9.- GENÓMICA	Genómica estructural: marcadores moleculares y mapas genéticos. Huella genética. Genómica estructural: mapas físicos y anotación de genomas. Genómica funcional: RNA-seq. Genética inversa. Genómica comparada. Metagenómica. Biología sintética.
10.- REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GÉNICA EN BACTERIAS.	Modelo del operón de Jacob e Monod para la regulación de los genes lac de E. coli. Control positivo del operón lac. El operón triptófano en E. coli: control negativo y atenuación. Regulación mediada por RNA.
11.- REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GÉNICA EN EUCARIOTAS.	Cambios en la estructura da cromatina. Metilación del DNA. Control de la transcripción. Control del procesamiento del RNA. Control de la estabilidad del mRNA. Control a nivel de la traducción. Interferencia por RNA. Epigenética.
PRÁCTICA 1: AISLAMIENTO DE DNA GENÓMICO.	Extracción de DNA genómico. Electroforesis de DNA en gel de agarosa. Cuantificación de DNA.
PRÁCTICA 2: PCR.	Amplificación por PCR del gen CHD. Análisis de un polimorfismo de intrones para el sexado de aves.
PRÁCTICA 3: BIOINFORMÁTICA.	Edición y análisis de secuencias de ácidos nucleicos. BLAST. GenBank: búsqueda y análisis de registros. Diseño de cebadores. PCR virtual. Clonación dirigida.

Metodologías / pruebas	Competéncias	Horas presenciales	Horas no presenciales / trabajo autónomo	Horas totales
Sesión magistral	A5 A8 A11 A12 A15 B2 B3 B7	28	28	56
Seminario	A5 A8 A11 A12 A15 A29 B1 B2 B3 B5 B7	8	16	24
Trabajos tutelados	A5 A8 A11 A12 A15 A29 B1 B2 B3 B5 B7	0	16	16
Prácticas de laboratorio	A5 A8 A11 A12 A15 A30 A31 B1 B2 B3 B5 B7	6	6	12
Prácticas a través de TIC	A5 A8 A12 A15 B2 B3 B5 B7	9	9	18
Prueba mixta	A5 A11 A12 A15 A29 B1 B2 B3 B7	4	18	22

Atención personalizada		2	0	2

(*)Los datos que aparecen en la tabla de planificación són de carácter orientativo, considerando la heterogeneidad de los alumnos

Metodologías	Descripción
Sesión magistral	El profesor explica los contenidos fundamentales de cada tema del programa y plantea preguntas.
Seminario	Se resuelven cuestiones y problemas y/o se someten a discusión aspectos de la materia.
Trabajos tutelados	Resolución de dos cuestionarios con ejercicios y preguntas relacionadas con algún aspecto de la materia. Actividad a realizar en grupo.
Prácticas de laboratorio	El alumno lleva a cabo experiencias de laboratorio siguiendo un guión, bajo la supervisión del profesor.
Prácticas a través de TIC	Se tratan cuestiones que requieren la consulta de bases de datos y la utilización de herramientas bioinformáticas.
Prueba mixta	Prueba escrita sobre los contenidos teóricos de la materia.

Metodologías	Competéncias	Descripción	Calificación
Prácticas de laboratorio	A5 A8 A11 A12 A15 A30 A31 B1 B2 B3 B5 B7	Se valorará el grado de conocimiento y de comprensión general de las prácticas realizadas mediante una prueba con preguntas tipo ensayo, test de respuesta múltiple, de respuesta breve y/o de asociación.	15
Trabajos tutelados	A5 A8 A11 A12 A15 A29 B1 B2 B3 B5 B7	Se valorará la capacidad de solucionar problemas y de relacionar los contenidos de la materia mediante dos pruebas con preguntas test de respuesta múltiple, de respuesta breve y/o de asociación.	10
Prueba mixta	A5 A11 A12 A15 A29 B1 B2 B3 B7	Se valorará el grado de conocimiento y comprensión general de la materia. Puede incluir preguntas tipo ensayo, de respuesta múltiple, de respuesta breve y/o de asociación, más resolución de problemas.	55
Prácticas a través de TIC	A5 A8 A12 A15 B2 B3 B5 B7	Se valorará el grado de comprensión de los análisis realizados y de conocimiento de las herramientas bioinformáticas utilizadas. La prueba requiere el uso de un ordenador conectado a internet y equipado con los programas bioinformáticos a utilizar.	20

Observaciones evaluación
Para ser evaluado es imprescindible realizar las pruebas sobre teoría (prueba mixta), prácticas de laboratorio y prácticas TIC. Para superar la materia debe alcanzarse un 5 y tener >4 en las pruebas mixtas y una calificación media en las prácticas >4. Si la calificación resultante de la suma de todas las actividades evaluables fuese igual o superior a 5, pero no se reuniesen los requisitos indicados, la calificación sería 4,9 (suspenso). Se considera No Presentado (NP) cuando el alumno no se presente al examen del período oficial de evaluación. Las matrículas de honor se otorgarán preferentemente entre los alumnos que alcancen la calificación igual o superior a 9 en la primera oportunidad de la convocatoria (enero). Se realizará un examen parcial y en caso de tener una calificación mayor de 4 no tendrá que repetirse en las oportunidades de enero y julio. En la segunda oportunidad (julio) se podrá optar por: (A) asumir los criterios de evaluación de la primera oportunidad (especificados en el apartado EVALUACIÓN); o (B) realizar las pruebas correspondientes a la teoría (prueba mixta), prácticas de laboratorio y TIC, representando en este caso un 65% la prueba mixta. La elección de la opción B deberá ser comunicada 10 días antes de la fecha del examen. En el caso de alumnado con dedicación a tiempo parcial y dispensa de exención de asistencia, podrán adoptarse medidas adicionales para que se pueda superar la materia, tales como flexibilidad en el horario de prácticas o realización de una prueba global de evaluación de los resultados del aprendizaje. Los estudiantes que soliciten la convocatoria adelantada de diciembre podrán escoger entre la aplicación de la guía docente en vigor o del curso anterior. La realización fraudulenta de pruebas o actividades de evaluación, una vez comprobada, implicará directamente la calificación de "0" en la oportunidad correspondiente.

Básica	Klug, W.S., Cummings, M.R., Spencer, C.A (2013). Conceptos de Genética . Pearson/Prentice Hall, Madrid Klug, W.S., Cummings, M.R., Spencer, C.A., Paladino, M.A., Killian, D.J. (2020). Concepts of Genetics. Pearson Education, Harlow Pierce, B.A. (2015). Genética: un enfoque conceptual. Médica Panamericana, Madrid Pierce, B.A. (2020). Genetics: a conceptual approach. Freeman, New York

Complementária	Lodish, H., Berk, A., Kaiser, C.A., Krieger, M., Bretscher, A., Ploegh, H., Amon, A., Scott, M.P. (2016). Biología celular y molecular (7ªed) . Médica Panamericana, Madrid Alberts, B., Johnson, A., Lewis, J., Raff, M., Roberts, K., Walter, P. (2010). Biología molecular de la célula. Omega, Barcelona Herráez, A. (2012). Biología molecular e ingeniería genética. Elsevier, Ámsterdam Lewin, B. (2008). Genes IX. McGraw-Hill. México Benito, C., Espino, F.C. (2013). Genética: conceptos esenciales. Médica Panamericana, Madrid Snustad, D.P., Simmons, M.J. (2012). Genetics (6th ed.). John Wiley and Sons, New York Brooker, R.J. (2018). Genetics: analysis and principles (6th ed.). McGraw-Hill, New York Hartwell, L.H., Goldberg, M.L., Fischer, J.A., Hood, L., Aquadro, C.F. (2015). Genetics: from genes to genomes (5th ed.) . McGraw-Hill, New York Brown, T.A. (2017). Genomes 4 . Garland Science, New York Russell, P.J. (2010). iGenetics: a molecular approach (3rd ed.) . Benjamin Cummings, San Francisco Perera, J., Tormo, A., García, J.L. (2002). Ingeniería genética. Vol. I: Preparación, análisis, manipulación y clonaje de DNA. Síntesis, Madrid Perera, J., Tormo, A., García, J.L. (2002). Ingeniería genética. Vol. II. Expresión de DNA en sistemas heterólogos. Síntesis, Madrid Griffiths, A.J.F., Wessler, S.R., Carroll, S.B., Doebley, J. (2015). Introduction to genetic analysis (11th ed.). W.H. Freeman, New York Krebs, J.E., Goldstein, E.S., Kilpatrick, S.T. (2012). Lewin genes: fundamentos. Médica Panamericana, Madrid Watson, J.D., Baker, T.A., Bell, S.P., Gann, A., Levine, M., Losick, R. (2014). Molecular biology of the gene. Pearson, Boston Cox, M.M., Doudna, J.A., O'Donnell (2012). Molecular biology: principles and practice. W.H. Freeman, New York Craig, N.L., Cohen-Fix, O., Green, R., Greider, C., Storz, G., Wolberger, C. (2014). Molecular biology: principles of genome function. Oxford University Press, Oxford Real García, M.D., Raussell Segarra, C., Latorre Castillo, A. (2017). Técnicas de ingeniería genética. Síntesis, Madris
	Consultar la plataforma Moodle para fuentes de información adicionales.